16S rDNA鉴定细菌的方法

16S_rDNA鉴定细菌的方法

16SrDNA鉴定细菌的方法
细菌16SrDNA鉴定主要分为7个部分：
1.提取细菌基因组DNA,
2.设计/选择引物进行PCR扩增，电泳检测纯度与大小。

3.琼脂糖凝胶电泳分离
4.胶回收目的片段
5.目的片段测序。

6.BLAST比对获取相似片段。

7.构建系统进化树
试剂：

1.1培养基：通常选择组分简单且细菌生长良好的培养基（培养基组分过于复

杂会影响DNA的提取效果，也可以在裂解细菌前用TE缓冲液对菌体进行洗涤。）。

1.2 1M Tris-HCl (pH7.4, 7.6, 8.0)（1L）：121.1gTris，加浓盐酸约（70ml,
60ml,42ml），高温高盐灭菌后，室温保存。冷却到室温后调pH，每升高

pH大约下降0.03个单位。(Tris-HCl缓冲液（0.05mol/L，25℃）
50ml0.1mol/LTris）溶液与xml 0.1mol/L 盐酸混匀后，加水稀释至100ml。

Tris缓冲液
不仅被广泛用作核酸和蛋白质的溶剂，Tris也是蛋白质电泳缓冲液的主要成分之一)
1.3 0.5M EDTA（pH8.0）（1L）：186.1gNa2EDTA?2H2O，用NaOH调pH至8.0
（约20g）,高温高压灭菌，室温保存。(配置方法
1.称取186.1gNa2EDTA?2H2O，置于1L烧杯中。2.加入约800mL的去离子水，

充分搅拌。3.用NaOH调节pH值值8.0（约20gNaOH）。注意：pH值至8.0
时，EDTA才能溶解。4.加去离子水将溶液定容至1L。5.适量分成小份后，

高温高压灭菌。6.室温保存。）
1.4 10×TEBuffer(缓冲液）(pH7.4，7.6，8.0)（1L）：组分：100mM Tris-HCl，
10mM EDTA。1MTris-HCl（pH7.4，7.6，8.0）取100ml，0.5MEDTA（pH8.0）
取20ml。高温高压灭菌，室温保存。

1×TEBuffer用10×TEBuffer稀释10倍即可。

1.5 10%SDS（W/V）：称10gSDS，68℃加热溶解，用浓盐酸调pH至7.2。室温
保存。用之前在65℃溶解。配置时要戴口罩。

6、5MNaCl：称292.2gNaCl，高温高压灭菌，4℃保存。

7、CTAB/NaCl（10%CTAB，0.7MNaCl）：溶解4.1gNaCl，加10gCTAB（十六烷
基三甲基溴化铵），加热搅拌。用之前在65℃溶解。

8、氯仿/异戊醇：按氯仿：异戊醇=24：1（V/V）的比例加入异戊醇。 9、酚/氯仿/异戊醇（25：24：1）：按苯酚与氯仿/异戊醇=1：1的比例混合Tris-HCl
平衡苯酚与氯仿/异戊醇。

10、TAE缓冲液：使用液1×：0.04mol/L Tris-乙酸，0.001mol/L EDTA。浓
储存液50×：242gTris，57.1ml 冰醋酸，100ml 0.5 mol/L EDTA (pH8.0)。

11、6×上样缓冲液（100ml）：0.25%溴酚蓝（BPB），40%蔗糖，10

mmol/LEDTA
(pH8.0)（0.2ml），4℃保存。

12、0.6%琼脂糖凝胶：称取0.3g琼脂糖用TAE溶液配置50ml。

13、EB：10mg/ml。称取1g溴化乙锭定容至100ml。棕色瓶室温避光保存。EB的工作浓度为0.5ug/ml。当配置50ml琼脂糖凝胶时加入EB为 （因EB是剧毒物质，目前很多实验室用生物荧光染料替代，常用的2.5ul。

有Gelred等）
14、蛋白酶K：20mg/ml 溶于水，-20℃保存，反应浓度50ug/ml，反应缓冲液：0.01mol/L Tris (pH 7.8), 0.005 mol/L EDTA, 5% SDS，反应温度

37-56℃。无需预处理。

15、RNaseA：10mg/ml。25mg RNase A 加1MTris（pH7.5）25ul，2.5MNaCl 15ul，无菌水2460ul，于100℃加热15分钟，缓慢冷却至室温，分装成小份保存于-20℃。（为避免RNA的干扰，使用RNA酶降解基因组中的RNA。）

1.1细菌基因组DNA提取
基本步骤：

基因组DNA提取所需仪器：高速冷冻离心机、恒温冰箱、移液器、水

平电泳槽、紫外/荧光观测仪
细菌基因组DNA提取方法综述
细菌基因组DNA的提取方法主要有5种。不同的方法所选择的试剂会

有所不同。

1快速微量提取法
取1.5ml菌体培养物于一灭菌Ep管中，12000rpm离心1min,丢去上清夜，

收集菌体。

加入400ul裂解液（40mMTris-醋酸，20mM醋酸钠,1mMEDTA,1%SDS,pH7.8）
混匀,置于37oC水浴1hr。

然后加入200ul5mol/L的氯化钠溶液，混匀后于13000rpm离心15min。 取上清液，用苯酚抽提2次，氯仿抽提1次。

加两倍体积无水乙醇，1/10体积醋酸钾(3M,pH8.0)，-20度保存1小

时后，

13000rpm离心15min，弃上清液，沉淀用70%乙醇洗2次；置于室温

干燥后，溶于50ulTE溶液中，置4℃保存备用。

2蛋白酶/SDS法制备
?用10ml含适当抗生素的GBM过夜培养Delftiasp.

?4000rpm离心10min收集菌体，用WashingTE（50mmol/LTris-HClpH8.0,10mmol/LEDTA pH8.0）洗菌体2次。

?将菌体充分悬浮在5ml1×TE缓冲液中，先后加入0.5ml5mg/L的蛋白酶、

0.5ml10% SDS，轻轻混匀后50℃放置3h-5h。

?用等体积的Tris饱和苯酚抽提2次，苯酚/氯仿/异戊醇抽提一次，氯仿抽

提一次。（取上清液。

?乙醇沉淀DNA。

?用自动移液器吸管头将絮状DNA沉淀块吸附到Ep管中，70%乙醇洗2次，干
燥后溶于适

?

当1×TE或ddH2O中。

3
◆细菌培养：细菌接种于5ml液体培养基中，37℃摇床（300rpm）培养过液。◆细菌收集：取1ml培养物于1.5mlEP管中，室温8000rpm

离心5min，弃上
清，沉淀重新悬浮于1mlTE（pH8.0）中（用ddH2O也行)。◆菌体裂解：加入6μl50mg/ml的溶菌酶，37℃作用2h。再加

2mol/LNaCl50
μl，10%SDS110μl，20mg/ml的蛋白酶K3μl，50℃作用3h或37℃过夜。（此时菌液应为透明粘稠液体）。

◆抽提：菌液均分到两个1.5mlEP管，加等体积的酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶
1)，混匀，室温放置5-10min。12000rpm离心10min。抽提两次。（上

清很粘稠，吸取时应小心，最好枪头尖应剪去）。

◆沉淀：加0.6倍体积的异丙醇，混匀，室温放置10min。12000rpm离心10。◆洗涤：沉淀用75%的乙醇洗涤。

◆抽（凉）干后，溶于50μlddH2O中，取2-5μl电泳。作PCR模板用。

?

5CTAB/NaCl裂解法
?接两环菌（0.75ml甘油管菌液）于25mlLB培养基中，37℃、200r/min培

养24h。

?取1.5ml菌液于1.5mlEppendorf 离心管中，8000r/min离心5分钟,弃去

上清。

?加入1.5mlTE离心洗涤后,用567ul TE溶解菌体,混匀。

?加入30μl10%SDS和3ul 20 mg/ml的蛋白酶K（100ug/ml），混匀，

于

37℃温育1h。

?加入100μl5mol/L NaCl,充分混匀，再加入80μlCTAB/NaCl,混匀,65℃温育10分钟。

?加入等体积的氯仿/异戊醇(24:1)（0.8ml）,混匀,12000r/min离心5分钟,
保留上清。

?上清中加入等体积的酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1)(0.8ml),混匀,12000r/min离心5分钟,保留上清。

?加入0.6倍的异丙醇（0.48ml）,轻轻混合直到DNA沉淀下来 （0.5h）,12000r/min离心15分钟,收集DNA沉淀,用75%乙醇(1ml)12000r/min离心5分钟洗涤DNA沉淀，真空干燥0.5h。

?用50ul双蒸水溶解DNA,加入终浓度为20μg/mlRNaseA，4℃保存。 ?用0.6%琼脂糖凝胶电泳鉴定提取的DNA, 每孔点样6μl(4μl样品+2μl
loadingbuffer) , 80 V , 电泳1.5小时。

2.设计选择引物进行16SrDNA的PCR扩增
一般细菌鉴定选择通用引物，最常用的通用引物为27F/1492R。

27F：5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'1492R：5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3'

2.1实验原理
2.1.1PCR
多聚酶链式反应(polymerasechainreaction)简称ＰＣＲ技术，是８０年代中期发展起来的一种体外扩增特异ＤＮＡ片段的技术。此法操作简便，可在短时间内在试管中获得数百万个特异的目的ＤＮＡ序列的拷贝，ＰＣＲ技术虽然问世仅数年时间，但它已迅速渗透到分子生物学的各个领域，引起了生物技术发展的一次革命，目前它在分子克隆，目的基础检测，遗传病的基因诊断，法医学，考古学等方面得到了广泛的应用。

ＰＣＲ技术实际上是模拟体内DNA合成过程，是在模板ＤＮＡ，引物和４种脱氧核苷酸存在的条件下依赖于ＤＮＡ聚合酶的酶促合反应，ＰＣＲ技术的特异性取决于引物和模板ＤＮＡ结合的特异性。反应分三步：①变性（denaturation）；②退火（annealing）；③延伸（extension），反应过程见图。

PCR（PolymeraseChain Reaction) 的原理
2.1.216SrDNA的核酸序列分析
16SrDAN是编码原核生物核糖体小亚基rRNA（16SrRNA）的基因，是细菌分类学研究中最常用、最有用的“分子钟”。16SrRNA的序列高度保守，可精确指示细菌之间的亲缘关系，16SrRNA的大小为1500bp左右，所含信息能反映生物界进化关系，易操作，适用于各级分类单元。目前常用的是建立在PCR技术基础上
较之23SrDNA等看家基因的16SrRNA基因的直接测序法，方便快捷。

而异，它具有分子大小适中，突变率小等优点，素有“细菌化石”之称。

其序列包含10个可变区（variableregion）和与之相同的11个恒定区（constantregion），可变区因细菌而异，且变异程度与细菌的系统发育密

切相关。

2.1.3PCR法的操作过程
Step1: DNA热变性；Step2: 引物退火；Step3: 引物延伸2.2PCR反应标准体系
?DNA模板
?引物
?反应缓冲液

?dNTP

?ddH2O
?耐热聚合酶
2.2.1PCR反应体系各组分的作用和使用量及反应条件
ＤＮＡ模板：反应中ＤＮＡ量在５０ng～２００ng左右。且ＤＮＡ纯度较高，以增加

反应特异性。

dNTP:反应体系中达100μM～200μM。

Mg2+：Mg2+是Taq酶的辅基浓度在2.0mM左右，浓度太低Taq酶活力降低；太高反应特

异性降低。

引物：根据目的基因两侧特定序列设计。引物约20碱基左右；Ｇ＋Ｃ含

量在40％－

70％之间；引物内部不能有回该序列；引物３’端不能互补。 Taq酶：它是从嗜热杆菌中提取的耐热性ＤＮＡ聚合酶，在９５℃时３０分钟还有５

０％活力。

变性温度：在９３～９５℃之间使模板充分变性。

复性温度：５５℃左右，此温度选择是根据模板和引物配对结合强弱

而定，它是反应

特异性的决定因素。

延伸温度：７０～７２℃左右，为Taq酶最适反应温度。

2.2.2材料设备及试剂
设备：eppendorf管、微量取液器、台式高速离心机、电泳仪、电泳槽、凝胶成像系统、PCR仪
试剂：16SrDNA引物、细菌基因组DNA、TaqPlus、dNTP、PCR、冲液、琼脂糖、TAE电极缓冲液、LamdarDNA/HindⅢ、染色液、加样缓冲液 2.2.3操作步骤
PCR反应
依次混匀下列试剂

5μl10×PCR反应缓冲液
1μl4种dNTP
2μl上游引物（引物１）
2μl下游引物（引物２）
1μl 模板DNA

0.5μl Taq DNA聚合酶

38.5μlH2O
混匀后离心5秒。

扩增：用94℃变性3分钟，94℃变性1分钟，61℃退火1分钟,72℃延伸1分钟,循环30轮,进行PCR。最后一轮循环结束后,于72℃下最后延伸

电泳检测：1%琼脂糖凝胶电泳，分析PCR

加A尾巴，所以在克隆之前最好搞清楚使用的酶到底是否加A，否则克隆出来的白班太少，又要讨论很久。具有3'到5'外切酶活性的高保真酶就不会产生A尾巴。

产物末端加A步骤：
用高保真酶扩增完之后，在反应管中加入0.7-1unit的Tap聚合酶。无需更换buffer
期中的dATP已经够用。

在72孵育8-10min。

立即进行纯化，沉淀、跑胶、或用纯化试剂盒。这一点相当重要，否

则高保真聚合酶会

将A尾巴或T载体上的T尾巴切掉。

1.2将加A尾巴的PCR产物与T载体连接
常用的T载体有Invitrogen的T载体；Promege的pGEM-T和TaKaRa的pMD18-T。

1.3将载体与目的片断的连接产物转化到大肠杆菌感受态细胞中进行液体摇床培养，涂平板进行蓝白斑挑选。

1.4对挑选的菌落提质粒，电泳检测大小，对正确的阳性克隆的质粒进行酶切目的片断回收。

目前对于T-A克隆技可以通过T-A克隆试剂盒来完成。

细菌16SrDNA鉴定是应注意的问题和常见问题
1细胞裂解注意事项
1.1材料应适量，过多会影响裂解，导致DNA量少，纯度低

1.2选择适当的裂解处理方式
1.3高温温浴室定时轻柔震荡
2核酸分离纯化
2.1采用吸附材料吸附的方式分离DNA时，应提供相应的缓冲体系。

2.2采用有机（酚/氯仿）抽提时应充分混匀，但动作要轻柔。2.3离心分离两相时，应保证一定的转速和时间。

2.4针对不同材料的特点，在提取过程中辅以相应的去杂质的方法。

3核酸沉淀、溶解
3.1当沉淀的时间有限时，用预冷的乙醇或异丙醇沉淀，沉淀会更充分。

3.2沉淀是加入1/10体积的NaAc(PH5.2,3M)，有利于充分沉淀。3.3沉淀后应用70%的乙醇洗涤，以除去盐离子等。

3.4晾干DNA，让乙醇充分挥发。

3.5若长期储存建议用TE缓冲液溶解，TE中的EDTA能螯合Mg2+或Mn2+离子，抑制DNase，TE缓冲液PH8.0可以防止DNA发生酸解。

4DNA样品不纯，抑制后续酶解和PCR反应
4.1DNA中含有蛋白，多糖，多酚类杂质：应重新纯化DNA，去除杂质。

4.2DNA在溶解前有酒精残留，酒精抑制后续酶解反应：应重新沉淀DNA，让酒精充分挥发。

4.3DNA中残留有金属离子：应增加70%乙醇的洗涤次数（2-3次）。

5DNA提取量少

5.1实验材料不佳或量少：应尽量选择新鲜的材料。